LUCS 13 用於(yu) 對活的和死的真核細胞以及革蘭(lan) 氏陽性和革蘭(lan) 氏陰性細菌中的 DNA 和 RNA 進行染色。染料被 488 nm 的藍色激光激發。其熒光發射在熒光素通道中檢測到,與(yu) DNA 結合時峰值為(wei) 509 nm,與(yu) RNA 結合時峰值為(wei) 514 nm。
該染料可用於(yu) 同時標記細胞不可滲透的核標記物(例如 YoDi-3),以使用熒光顯微鏡和流式細胞術評估細胞活力。
確切的方案取決(jue) 於(yu) 具體(ti) 的細胞類型和實驗任務。一般來說,可以描述如下:
準備 50 µM LUCS 13 儲(chu) 備溶液。為(wei) 此,將 990 µl 去離子水添加到 10 µl 5 mM LUCS 13 溶液中。儲(chu) 備液可以等分並冷凍以供長期儲(chu) 存。
要製備 1 µM LUCS 13 工作溶液,請將 20 µl 50 µM LUCS13 庫存添加到 980 µl PBS 中。
以合適的方式小心地從(cong) 生長表麵去除貼壁細胞。對於(yu) 懸浮細胞,從(cong) 下一點開始工作。
用冷 PBS(pH 7.4)清洗細胞一次。 300 g離心 5 分鍾獲得種子細胞 。
將細胞在 1 ml 1 μM LUCS 13 工作溶液中於(yu) 37°C 孵育 30 分鍾。
300 g離心 5 分鍾去除染料溶液 。
用 PBS 清洗細胞一次。
(可選)如有必要,可以將細胞在含 3.7% 甲醛的 PBS 中固定 15 分鍾,用 PBS 洗滌,然後用另一種染色劑重新染色。
處理 LUCS 13 溶液時請使用塑料瓶,因為(wei) 稀釋的染料可能會(hui) 粘在玻璃上。
使用無磷酸鹽緩衝(chong) 液(例如鹽水中的 15 mM HEPES)可獲得更明亮的染色結果。
在開始實驗之前,測試幾種染料濃度範圍從(cong) 10 nM 到 5 µM,以確定最佳的染料稀釋度。染色結果受許多因素影響:生長培養(yang) 基、細胞密度、其他細胞類型的存在、染色持續時間等。