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品牌 | 其他品牌 | 供貨周期 | 現貨 |
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應用領域 | 醫療衛生,環保,化工,生物產業,綜合 |
LeapWal PolyShooter 轉染試劑,產(chan) 品編碼:P09110。
LeapWal PolyShooter 轉染試劑,
PolyShooterTM
Transfection Reagent
Catalog Number:P09110
01/產(chan) 品概述
細胞轉染是指將外源分子導入真核細胞內(nei) 以改變其基因型或表型的一種技術。隨著分子生物學和細胞生物學研究的不斷發展,轉染已經成為(wei) 研究和控製基因功能的常規手段,廣泛應用於(yu) 基因功能研究、調控基因表達、突變分析和蛋白質生產(chan) 等領域。轉染大致可分為(wei) 物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。其中化學介導方法因其兼具高效低毒、方便快捷等優(you) 點,應用廣泛。化學介導方法包括經典的磷酸鈣共沉澱法、脂質體(ti) 轉染方法以及多種陽離子物質介導的轉染方法。
理想的細胞轉染方法應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優(you) 點。已有眾(zhong) 多文獻報道,脂質體(ti) 本身會(hui) 參與(yu) 細胞生理活動,影響基因表達,對研究數據產(chan) 生一定程度的幹擾。同時,脂質體(ti) 會(hui) 對目的細胞造成細胞毒性,這種毒性是由其脂質特性決(jue) 定的。市麵上多種商業(ye) 化的脂質體(ti) 轉染試劑要求細胞鋪板密度較高,以90%-95%為(wei) 佳,這有助於(yu) 減少陽離子脂質體(ti) 細胞毒性造成的影響。但是,如果研究的基因要求比較長的表達時間,例如細胞周期相關(guan) 基因,或者細胞表麵蛋白,又或者轉染後續需要進行繼續培養(yang) 和功能研究,則不適合用脂質體(ti) 核酸轉染試劑。目前眾(zhong) 多的研究者和生物公司將新一代轉染試劑的開發聚焦在非脂質體(ti) 的聚合物上,以尋找更高效低毒,同時對研究影響較小的轉染試劑。
LeapWal PolyShooter 轉染試劑,即PolyShooter Transfection Reagent是一種基於(yu) 陽離子高分子聚合物的新型轉染試劑,適用於(yu) DNA、RNA的轉染。其原理為(wei) 帶正電的高分子聚合物與(yu) 核酸帶負電的磷酸基團形成帶正電的複合物後,與(yu) 細胞表麵帶負電的蛋白多糖相互作用,並通過內(nei) 吞作用進入細胞,隨後在胞質中釋放,實現外源核酸的細胞轉染。
LeapWal PolyShooter 轉染試劑對多種常見細胞具有高水平轉染效率,具有高效低毒、操作簡單、重複性好等優(you) 點。其*的配方使其可直接加入培養(yang) 基中,血清的存在不會(hui) 影響轉染效率,這樣可以減少去除血清對細胞的損傷(shang) 。同時,轉染後不需要除去PolyShooter Transfection Reagent-核酸複合物或更換新鮮培養(yang) 基,也可根據具體(ti) 情況優(you) 化轉染體(ti) 係。
02/產(chan) 品組分
03/保存條件
冰袋(wet ice)運輸。4℃保存,有效期6個(ge) 月。-30℃至-10℃保存,有效期12個(ge) 月,避免反複凍融。
04/產(chan) 品特點
優(you) 秀的轉染效率——針對廣泛類型的細胞,均表現出優(you) 秀的轉染效率和高重組蛋白表達水平
細胞毒性低——作用溫和,能較好地實現高轉染效率與(yu) 低細胞毒性之間的平衡
操作簡單——在血清存在時亦具有可靠的轉染效率,轉染後無需去除複合物或更換新鮮培養(yang) 基
高性價(jia) 比——經濟的價(jia) 格,同時實現高效的轉染效果
05/適用範圍
PolyShooter Transfection Reagent采用陽離子高分子聚合物為(wei) 主要成分,適用於(yu) DNA、RNA的轉染。
06/實驗流程概要
07/實驗步驟(以24孔板為(wei) 例,其他培養(yang) 板加樣體(ti) 積參考表一:轉染量度標準)
1: 準備待轉染細胞
貼壁細胞:轉染前一天,將消化後的細胞按照每孔0.3-2x105個(ge) 細胞的量進行鋪板,使其在轉染時密度為(wei) 50%-60%。
懸浮細胞:轉染當天,配製轉染試劑-核酸複合物之前,在24孔板中進行細胞鋪板,每500 µL生長培養(yang) 基中加入2-5x105個(ge) 細胞。
Ø 細胞狀態會(hui) 極大影響轉染效率,待轉染細胞應處於(yu) 良好生長狀態,建議使用生長處於(yu) 指數期、存活率大於(yu) 90% 的細胞進行轉染。
2: 準備PolyShooter轉染試劑-核酸複合物
(1)取1 μg質粒加入到1.5 mL離心管中,加入2.5 μL* PolyShooter 轉染試劑與(yu) 質粒混合,室溫孵育3分鍾。
Ø * 轉染試劑使用量受細胞類型及其他實驗條件影響,通常情況下,DNA(μg)和 PolyShooter轉染試劑(μL)的用量比例為(wei) 1:2.5。建議初次使用時,可在1:2-1:5的範圍內(nei) 調整以優(you) 化轉染效果。
(2)往上述混合物中加入100 μL無血清基礎培養(yang) 基(與(yu) 培養(yang) 體(ti) 係一致,且無血清無雙抗),輕輕混勻,在室溫下靜置30分鍾,形成PolyShooter轉染試劑-核酸複合物。
Ø PolyShooterTM轉染試劑-核酸複合物在室溫下4個(ge) 小時內(nei) 保持穩定。
3: 細胞轉染
給細胞更換新鮮的預熱的*培養(yang) 基500 μL/孔,將上述100 µL PolyShooter 轉染試劑-核酸複合物加入每孔細胞,輕輕搖動培養(yang) 板混勻。
Ø 對於(yu) 懸浮細胞係:轉染5小時後,可選擇加入PMA和/或PHA以提高CVM啟動子的活性並促進基因表達。對於(yu) Jurkat細胞,PHA和PMA的終濃度分別為(wei) 1 µg/mL和50 ng/mL,可以提高CMV啟動子活性和基因表達。對於(yu) K562細胞,隻加入PMA足以提高啟動子活性。
4. 分析轉染細胞
轉染細胞培養(yang) 24-48小時後,可根據實際情況用熒光檢測法、Western Blot、RT-PCR、ELISA、流式細胞術、報告基因等檢測轉染效果,或加入篩選藥物進行穩定細胞株的篩選。
08/注意事項
1. 核酸質量:想要獲得最高的轉染效率和更低的細胞毒性,應選用高純度、無菌、無汙染、無內(nei) 毒素的優(you) 質核酸。質粒中的內(nei) 毒素是轉染的大敵,內(nei) 毒素會(hui) 導致轉染效率顯著下降,特別是對內(nei) 毒素敏感的細胞,例如原代細胞、懸浮細胞、造血細胞等。推薦使用無內(nei) 毒素質粒抽提試劑盒進行質粒提取,保證質粒A260/A280比值為(wei) 1.8-2.0。同時,需合理計算質粒用量,轉染過量的質粒可能會(hui) 導致細胞毒性甚至死亡;
2. 細胞質量:細胞狀態會(hui) 極大影響轉染效率,建議使用生長處於(yu) 指數期、存活率大於(yu) 90%的細胞進行轉染;
3. 細胞密度:建議細胞傳(chuan) 代後12-24 h內(nei) 、細胞密度為(wei) 50%-60% 時進行轉染。不同的細胞轉染實驗,對細胞密度的要求不盡相同。在進行不同核酸或不同細胞係的轉染時,需要根據說明書(shu) 再次優(you) 化實驗條件。此外,在實驗過程中保證相同的接種條件,確保實驗數據的可重複性;
4. 質粒與(yu) 轉染試劑使用比例:對於(yu) 大多數細胞係,轉染複合物中DNA (μg)與(yu) PolyShooter Transfection Reagent (μL) 的比例在1:2至1:5之間,推薦比例為(wei) 1:2.5。想要獲得*的轉染結果,需要對這一比例進行優(you) 化,根據所轉染細胞及質粒選擇適合的轉染比例;
5. PolyShooter Transfection Reagent可用於(yu) 有血清培養(yang) 基的轉染,並且轉染前後不需要換培養(yang) 基。但是,製備轉染複合物時要求用無血清基礎培養(yang) 基稀釋DNA和轉染試劑,因為(wei) 血清會(hui) 影響複合物的形成;
6. 由於(yu) 一些特殊培養(yang) 基中的某些成分可能會(hui) 抑製陽離子聚合物介導的轉染,因此有必要檢測特殊培養(yang) 基與(yu) PolyShooter Transfection Reagent的相容性;
7. 為(wei) 了您的健康安全,請規範操作,穿戴實驗服與(yu) 手套開展實驗;
8. 本產(chan) 品僅(jin) 供科研使用,請勿用於(yu) 臨(lin) 床診斷及治療。
09/實驗案例分析
1: 轉染前一天,將圖2所示9種狀態良好的細胞接種於(yu) 24孔板,使其在轉染時密度約為(wei) 50%。
2: 按照每孔計量,取1μg GFP質粒加入到1.5 mL離心管中,加入2.5 μL PolyShooter Transfection Reagent與(yu) 質粒混合,室溫孵育3 min後,往混合物中加入100 μL無血清基礎DMEM培養(yang) 基,輕輕混勻,在室溫下靜置30 min,形成PolyShooter轉染試劑-核酸複合物。
3: 給細胞更換新鮮的預熱的*培養(yang) 基500 μL/孔,將上述100 µL PolyShooter 轉染試劑-核酸複合物加入每孔細胞,輕輕搖動培養(yang) 板混勻。
4:轉染細胞培養(yang) 48小時後,用熒光顯微鏡檢測GFP綠色熒光蛋白表達情況,並拍照記錄,實驗結果如圖2所示。
圖2: 轉染細胞培養(yang) 48小時後,用熒光顯微鏡檢測GFP綠色熒光蛋白表達情況
10/其他相關(guan) 產(chan) 品
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