8.固相肽合成的一個(ge) 例子
以下是使用堿不穩定的9-芴基甲氧基羰基(Fmoc)保護基團在聚酰胺或聚苯乙烯樹脂上合成肽的合成步驟的概述。使用下麵概述的技術,將獲得在N-末端用乙酰基封端,在C-末端用伯酰胺(CONH2)封端的肽。
為(wei) 手動肽合成設置玻璃器皿
手動肽合成可以在具有三通閥的燒結過濾器反應容器中完成,該三通閥通過1孔塞子安裝在1 L側(ce) 臂真空燒瓶上。一個(ge) 閥門用於(yu) 充入氮氣,氮氣首先通過一個(ge) 小的Drierite柱,然後進入反應混合物以攪拌溶液和混合試劑。另一個(ge) 閥門用於(yu) 排空過量的反應溶液,並使用真空瓶洗滌溶劑。用於(yu) 固相合成的所有玻璃片應在使用前用矽烷化試劑(如DCM中的1-5%二甲基二氯矽烷)處理,以避免靜電荷的積累,靜電荷的積累會(hui) 使樹脂很難處理。
聚酰胺樹脂的製備
聚酰胺(PL-DMA)樹脂(1g)用乙二胺(40 ml)在50 ml Falcon管中在搖床上處理過夜,然後過濾,用5×10ml 1:1二甲基甲酰胺(DMF):二氯甲烷(DCM)溶液、5×10ml 1:1 DCM洗滌,並使用苯並三唑-1-基-氧基三吡咯烷六氟磷酸鹽(PyBOP) (3 eq)、1-羥基苯並三唑水合物(HOBt) (3 eq)和二異丙基乙胺(DIPEA)裝載Fmoc-Rink然後可以在真空下幹燥,並儲(chu) 存在-15攝氏度,直到需要。
在合成前和合成過程中處理樹脂
樹脂首先在10毫升1∶1 DCM∶DMF中溶脹15分鍾,然後瀝幹。每次完成氨基酸偶聯後,還用5×10ml 1:1 DCM和DMF洗滌樹脂。
Fmoc-去保護
每次氨基酸偶聯後,用2×10ml 20%呱啶的DMF溶液進行Fmoc去保護,每次處理用N2攪拌10分鍾。然後用5×10毫升DMF洗滌樹脂,接著用5×10毫升1:1 DCM:DMF洗滌。
添加氨基酸
為(wei) 了在Fmoc-聚酰胺-Rink樹脂上開始肽合成,通過用呱啶處理樹脂來除去Fmoc基團。然後使用在1∶1 DCM∶DMF中的PyBOP (3 eq)、HOBt (3 eq)和DIPEA (6 eq)將第一個(ge) 氨基酸偶聯至樹脂的Fmoc-去保護的N-末端胺,或之前偶聯的氨基酸,直到樹脂對茚三酮呈陰性。
監測氨基酸偶聯的進展
氨基酸偶聯的過程可以用茚三酮或對氯醌來跟蹤。茚三酮溶液在遊離伯胺的存在下變成深藍色(陽性結果),但在其他情況下是無色的(陰性結果)。如果使用乙醛作為(wei) 溶劑,在伯胺的存在下,或者如果使用丙酮,在仲胺的存在下,對-氯醌溶液將使樹脂珠變成深黑色或藍色;否則珠子保持無色或淡黃色。(測試概述如下)
茚三酮測試(1)
向微量離心管中加入2滴40%苯酚的乙醇溶液、2滴0.014 M KCN的吡啶溶液和4滴5%茚三酮的乙醇溶液,以及抹刀一端大小的樹脂樣品,然後渦旋混合物,並在100°c下加熱5分鍾
用氯醌測試(2)
向微量離心管中加入5滴丙酮或乙醛、5滴對氯醌的甲苯飽和溶液,以及小刮刀一端大小的樹脂樣品,然後渦旋混合物,並在室溫下靜置5分鍾。丙酮用於(yu) 檢測仲胺,乙醛用於(yu) 檢測伯胺。
持續肽延伸
一旦氨基酸的偶聯完成,就洗滌樹脂,用呱啶去保護Fmoc基團,並再次洗滌樹脂,為(wei) 下一次偶聯做準備。重複這一過程,直到添加完所有必需的氨基酸。
乙酰化N-末端
肽序列完成後,可以用2ml 1:1乙酸酐和三乙胺在10ml 1:1 DCM:DMF中乙酰化N-末端胺1小時或直到茚三酮陰性,然後用5×10ml 1:1 DCM:DMF洗滌樹脂,然後將肽從(cong) 樹脂上切下。如果需要,N-末端也可以作為(wei) 遊離胺留下。
從(cong) 樹脂上切割肽
用3×10ml 96∶2∶2的TFA、三異丙基矽烷(TIPS)和水(H2O)處理樹脂,每次處理10分鍾,然後過濾掉樹脂,將合並的濾液靜置1小時,以確保除去酸不穩定的保護基團。
從(cong) 樹脂上切割後肽的處理
將TFA在旋轉蒸發器上蒸發至幹(或重油或玻璃,如果它不凝固的話),隨後向燒瓶中加入5 ml*醚以沉澱肽,並除去大部分副產(chan) 物。將肽和乙*的懸浮混合物加入到50 ml Falcon管中,並以3000 rpm的速度旋轉10-20分鍾(IEC離心機),直到可以倒出乙*而不損失任何肽。加入更多的後,通過渦旋使肽重新懸浮。再次離心混合物,倒出,洗滌過程重複兩(liang) 次以上。最後,產(chan) 品可以在脫粘器中的Falcon管中風幹過夜。
通常使用製備型HPLC來純化最終產(chan) 物。獲得質譜數據以確保獲得目標肽。